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博腾股份技术平台介绍之—酶催化技术(Biocatalysis)
2023-01-13 14:18  浏览:862
 传统制药工业生产过程工艺复杂

环保压力大且部分反应需要苛刻的条件发展绿色制药技术是打破环境污染这一限制制药行业发展瓶颈的关键[1]近年来随着酶制剂的规模化生产日益扩大其在化学品生产中的应用也得到了快速发展利用相应的酶可以将化学途径中的多步反应通过一步酶促反应来实现且具有高选择性高效率条件温和等优势也正是因为这些优势酶催化技术已经在部分药物中间体和原料药等的生产过程成功实现了产业化[2]


博腾秉承客户第一追求卓越的核心价值观为满足客户日益增长的希望用酶催化来更加绿色高效经济地生产药物中间体的需求于2018年在上海研发中心搭建了包括酶催化技术团队在内的技术平台并于2018年4月与世界领先的酶催化解决方案公司Codexis签订了战略合作协议目前博腾酶催化团队共有核心成员6人将着力打造完善的技术能力图1为客户提供从路线创新可行性研究酶开发制备筛选酶催化工艺开发和酶催化产品产业化放大等一站式CDMO酶催化解决方案

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图1 博腾酶催化技术能力

候选酶的高通量筛选

目前博腾的酶库包括Codexis的酶其他供应商来源的商品化酶以及具有博腾自主知识产权的酶通过战略合作协议Codexis向博腾开放了其包含1000余种工具酶的酶库使用权博腾可以利用这些酶开展筛选工艺优化等工作除此之外博腾也从其他的酶供应商处获得了商业化的酶来丰富自己的酶库资源更重要的博腾正积极建立自己独有知识产权的酶库并已初具规模博腾可以根据客户需要从以上酶库中选择相应的酶进行筛选

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图2 高通量筛选流程示意图

进行酶促反应时反应的结果可以通过检测底物的减少或产物的增加来判断而这些检测通常需要专业的分析仪器虽然可以精确地对结果做出判读但往往时间较长且需要繁琐的预处理操作效率较低有一些酶促反应如氧化还原反应通常需要如NAD(P)+等辅酶作为电子供体或受体可以利用这些辅酶的性质如特征性波长处吸光值的变化或颜色变化等来初步判断反应结果这些反应可以在多孔板如96孔板中用较小的体积如50-200微升进行反应当颜色反应等初步结果显示获得了有催化活力的结果之后将会通过液相或气相色谱等分析手段进一步鉴定产物并计算催化效率筛选流程图见图2目前博腾已具备高通量筛选能力可以在获得酶之后一周的时间内完成初筛工作随着更多自动化设备到位博腾的高通量筛选能力将更加强大

酶的制备和化学品的酶催化制备

经过分析方法鉴定确认后的酶将被用于进一步的酶催化工艺开发及优化以提高酶的催化效率降低成本实验室规模酶制备摇瓶+摇床通常可以用于制备毫克或克级的酶制剂足够用于实验室小体积的酶促反应用以筛选一些酶促反应初步反应条件等进一步可以通过发酵罐如1升5升10升等来实现实验室规模的发酵可获得10克级的酶制剂可以用于酶促反应条件的实验室规模的放大条件优化并用于制作展示用的小样化学品同时也可摸索并优化发酵条件积累的大量发酵控制参数为后期的中试放大20升300升等以及最后的工业化生产放大吨级摸索条件工业化的生产规模最大可达吨级可用于制备公斤级的酶制剂这些大量的酶制剂将被用于工厂规模的酶催化反应大量制备化学品示意图见图3

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 图3 酶的制备和化学品的酶催化制备

博腾完全按照项目的不同阶段对酶供应的不同需求搭建了弹性高效的酶制备生产设备目前博腾已具备完善的实验室规模的发酵能力中试发酵能力也初具雏形预计2019年底博腾将具备300升的发酵能力届时从只需少量酶量的毫克或克级实验室筛选一周内完成到实验规模10克级的发酵和催化工艺优化再到工业级公斤级酶催化生产周期视需求而定博腾都将有能力提供灵活的解决方案以满足客户不同规模的酶催化需求

自有知识产权酶库的建立

及酶的定向进化

工业上使用的酶通常来源于微生物在千百万年的进化过程中微生物为了在自然环境中的各种选择压力下存活物竞天择进化出了可以在温和条件下实现各种满足代谢需求的酶而酶的3D结构也让酶促反应有高度的底物特异性和空间选择性不同来源的酶对于相同底物的催化效率也可能有很大的不同

最初的酶库就是将文献中公开报道的一些在工业上有应用潜力的酶如氨基转移酶氧化还原酶脂肪酶等等用分子生物学的手段将其在另外的宿主体内表达如大肠杆菌酵母等可以大量获得目的蛋白从这些天然的酶中针对客户的需求开始筛选天然酶可能一开始无法满足客户对高活力高选择性高ee值等指标的要求所以在获得了可以初始的候选酶之后有时需要借助生物信息学结构生物学和分子生物学等手段对候选酶进行定向进化以期获得具有更高的催化效率更高的ee值更高的稳定性等满足客户需求的酶

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图4 计算机辅助的蛋白质定向进化

所谓酶的定向进化即在实验室里通过随机突变和重组人为制造大量的突变按照特定的需要和目的给予选择压力筛选出具有期望特征的蛋白质实现分子水平的模拟进化这个方法模拟了自然条件下的进化过程使在自然条件下千百万年才可以完成的进化在实验室里极短的时间内完成这是目前改善蛋白质性能最有效的方法[3]

定向进化的方法又可分为随机进化半理性进化和理性进化最初的定向进化由于缺少酶的结晶结构的足够信息所以通常用随机进化的方法比如易错PCRDNA shuffling等等[4-6]但存在文库庞大阳性率不高等缺点随着蛋白质结晶技术和计算机技术的发展人们对蛋白质三维结构的认识更加深刻于是就有了计算机辅助的半理性设计[7]和理性设计[8-11]可以对酶的活性位点区域进行有针对性的设计改造大大减少无效克隆的数量提高命中率但无论半理性设计还是理性设计都需要通过实验来验证而实验反馈的信息又可以更好地辅助完善理性设计近些年又出现了很多基于半理性设计的定向进化策略如CAST/ISM[12]以及发展迅速的人工智能技术机器学习也将有力助推蛋白质的定向进化工作图4简单展示了计算机辅助的理性设计的思路和流程

目前博腾已经具备了完善的分子生物学实验能力并在快速扩大自有知识产权的酶库而酶进化的技术平台也日趋完善

上海研发中心酶催化实验室

博腾酶催化实例

制药行业对酶催化技术的需求日趋旺盛博腾也在积极响应市场需求大力发展酶催化技术能力并取得了长足的进步

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表1 博腾成功的案例

表1汇总了博腾成功完成的酶催化项目案例赢得了客户的一致赞誉博腾酶催化团队将持续加强自身能力建设打造包括酶的挖掘筛选进化工艺优化酶制剂生产酶催化化学品生产在内的完整技术能力力争为客户提供货架式一站式CDMO酶催化服务图5

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图5 博腾 货架式一站式CDMO酶催化服务

参考文献

[1] Seldon R A. The E factorfifteen years on[J]. Green Chemistry20079121273-1283.

[2] Woodley J M. New opportunities for biocatalysismaking pharmaceutical processes greener[J]. Trends in Biotechnology2008266321-327.

[3] Sheldon RA, Pereira PC. Biocatalysis engineering: the big picture. Chem Soc Rev, 2017, 46(10): 2678–2691.

[4] Leung DW, Chen E, Goeddel DV. A method for random mutagenesis of a defined DNA segment using a modified polymerase chain reaction. Technique, 1989, 1: 11–15.

[5] Hawkins RE, Russell SJ, Winter G. Selection of phage antibodies by binding affinity: mimicking affinity maturation. J Mol Biol, 1992, 226(3): 889–896.

[6] Ruff AJ, Dennig A, Schwaneberg U. To get what we aim for——Progress in diversity generation methods. FEBS J, 2013, 280(13): 2961–2978.

[7] Cheng F, Zhu LL, Schwaneberg U. Directed evolution 2.0: improving and deciphering enzyme properties. Chem Commun, 2015, 51(48):9760–9772.

[8] Ebert MC, Pelletier JN. Computational tools for enzyme improvement: why everyone can- and should-use them. Curr Opin Chem Biol, 2017, 37: 89–96.

[9] Huang PS, Boyken SE, Baker D. The coming of age of de novo protein design. Nature, 2016, 537(7620): 320–327.

[10] Bornscheuer UT, Huisman GW, Kazlauskas RJ, et al. Engineering the third wave of Biocatalysis. Nature, 2012, 485(7397): 185–194.

[11] Privett HK, Kiss G, Lee TM, et al. Iterative approach to computational enzyme design. Proc Natl Acad Sci USA, 2012, 109(10): 3790–3795.

[12] Reetz MT, Bocola M, Carballeira JD, et al. Expanding the range of substrate acceptance of enzymes: combinatorial active-site saturation test. Angew Chem Int Ed, 2005, 44(27): 4192–4196.