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食品添加剂固定化葡萄糖异构酶制剂国家标准

   日期:2011-01-27     来源:www.cnenzyme.com    作者:酶网    
核心提示:

食品添加剂固定化葡萄糖异构酶制剂国家标准


中华人民共和国国家标准 食品添加剂 固定化葡萄糖异构酶制剂 GB 8274-87

Food additive
Immobilizod glucose isomerase preperation
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本标准适用于微生物发酵法生成的酶经固定化制成的固定化葡萄糖异构酶。
1 技术要求
1.1

食品添加剂固定化葡萄糖异构酶制剂国家标准


中华人民共和国国家标准 食品添加剂 固定化葡萄糖异构酶制剂 GB 8274-87

Food additive
Immobilizod glucose isomerase preperation
━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━
本标准适用于微生物发酵法生成的酶经固定化制成的固定化葡萄糖异构酶。
1 技术要求
1.1 外观:不结块,无异味。
1.2 项目和指标
━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━┳━━━━━━━━━━
项 目 ┃ 指 标
━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━╋━━━━━━━━━━
酶活力,μg 不低于 ┃ 2 000
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生产能力,t/kg 不低于 ┃ 1.5
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酶活力保存率(%)0.5℃,三个月 不低于 ┃ 85
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强度 ┃ 合格
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重金属(以Pb计),% 不超过 ┃ 0.004
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铅,% 不超过 ┃ 0.001
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砷(以As计),% 不超过 ┃ 0.0003
━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━╋━━━━━━━━━━
黄曲霉素毒B1,% 不超过 ┃ 0.0000005
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大肠菌群,个/100g 不超过 ┃ 30
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沙门氏菌 ┃ 不得检出
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注:生产使用的菌株和固定化酶需经毒性鉴定方能使用。

2 试验方法
2.1 外观:用目视判定。
2.2 酶活力测定
2.2.1 酶促反应方法Ⅰ(适用于链霉菌产生的葡萄糖异构酶)
2.2.1.1 试剂
2.2.1.1.1 70%(W/V)葡萄糖溶液:称取70克分析纯葡萄糖加入煮沸的蒸馏水中,再加热使
其完全溶解,冷却用蒸馏水定容至100mL。
2.2.1.1.2 pH7.5磷酸缓冲溶液:
0.2M磷酸二氢钠(GB 1267)溶液:称取31.2g磷酸二氢钠(NaH2PO4·2H2O),用蒸馏水溶
解并稀释至1000mL。
0.2M磷酸氢二钠(GB 1263)溶液:称取71.6g磷酸氢二钠(NaHPO4·12H2O),用蒸馏水溶
解并稀释至1000mL。
取一定量上述二溶液混合,用pH计校正pH至7.5。
2.2.1.1.3 0.5M硫酸镁(GB 671)溶液:称取12.3g硫酸镁(MgSO4·7H2O),加蒸馏水溶解,
用蒸馏水定容至100mL。
2.2.1.1.4 0.5M高氯酸(GB 623)溶液:量取21mL高氯酸(HClO4),用蒸馏水定容至500mL。
2.2.1.2 反应:固定称取合适量的酶(用固定化酶完整颗粒,不磨碎),用0.02M磷酸缓冲液
(pH7.5)1mL在3~7℃浸泡16h,加磷酸缓冲液1.5mL,硫酸镁溶液0.5mL,葡萄糖溶液1.5mL,再
加蒸馏水调整至总体积5mL,70℃反应1h,加高氯酸溶液5mL终止反应,然后测定果糖含量。
2.2.2 酶促反应方法Ⅱ (适用于游动放线菌产生的葡萄糖异构酶)。
2.2.2.1 试剂
2.2.2.1.1 3.0M葡萄糖溶液:称取分析纯无水葡萄糖54g,加煮沸蒸馏水使其溶解,并定容
至100mL。
2.2.2.1.2 0.3M磷酸缓冲溶液(pH7.0):称取107.4g分析纯磷酸氢二钠(Na2HPO4·12H2O),
加蒸馏水溶解并定容至1L(A液):称取46.3g分析纯磷酸二氢钠(NaH2PO4·2H2O)(GB1267),
加蒸馏水溶解,并定容至1L(B液)。各取一定量A、B液混合,用pH计校正pH至7.0。
2.2.2.1.3 0.03M硫酸镁溶液:称取0.739g分析纯硫酸镁(MgSO4·7H2O),加蒸馏水溶解,并
定容至100mL。
2.2.2.1.4 0.003M硫酸钴溶液:称取0.0843g分析纯硫酸钴(CoSO4·7H2O),加蒸馏水溶解,
并定容至100mL。
2.2.2.2 反应:固定称取合适量的酶(用固定化酶完整颗粒,不磨碎),用0.03M磷酸缓冲液
(pH7.0)1mL在3~7℃浸泡16h,加磷酸缓冲溶液0.5mL,硫酸钴溶液0.5mL,硫酸镁溶液0.5mL,
葡萄糖溶液2.5mL,加蒸馏水调整至总体积5mL。75℃反应1h,加高氯酸溶液5mL终止反应,
然后测定果糖含量。
2.2.3 果糖测定法(半胱氨酸-咔唑法)
2.2.3.1 试剂
2.2.3.1.1 1.5%(W/V)半胱氨酸盐酸盐溶液:称取生化试剂纯半胱氨酸盐酸盐0.375g,用
蒸馏水溶解,并稀释定容至25mL。
2.2.3.1.2 0.12%(W/V)咔唑酒精溶液:称取咔唑30.0mg,用无水酒精溶解并定容至25mL,
放置在棕色瓶中,24h后使用。
2.2.3.1.3 硫酸溶液:量取分析纯浓硫酸450mL,在不断搅拌下徐徐倒入190mL蒸馏水中。
2.2.3.1.4 标准果糖溶液:称取预先在55℃真空干燥至恒重的分析纯果糖125.0mg,用蒸馏
水定容至25mL(5mg/mL),存放于冰箱中备用。使用时稀释100倍(50μg/mL)。
2.2.3.2 测定程序
2.2.3.2.1 标准曲线的绘制:取25mL比色管分别加50μg/mg的果糖标准溶液0,0.2,0.4,
0.6,0.8mL,再用蒸馏水分别补充至1mL,然后每管中加入0.2mL半胱氨酸盐酸盐溶液,6mL硫
酸溶液,摇匀后,立即加入0.2mL咔唑酒精溶液,摇匀,于60℃水浴中保温10min,取出用水冷
却呈红紫色,用10mm光径的比色皿,在560nm波长下比色,以吸光度对果糖作图,即得标准曲
线。
2.2.3.2.2 样品测定:将2.2.1.2或2.2.2.2的反应终止溶液适当稀释后,准确吸取1.0mL,
使其中果糖含量在10~40μg范围内,然后按2.2.3.1.2的后步操作进行。根据获得的吸光
度在标准曲线图上查得相应的果糖量。
2.2.3.3 计算
u
X=━━━……………………………………………………………(1)
W
式中:X——酶活力,u/g;
u——酶单位,u;
W——样品量,g。
注:①GIU——酶单位的规定:酶在上述方法Ⅰ或方法Ⅱ的反应条件下,每小时生成1mg
果糖的酶量规定为1个单位,以GIU表示。将其除以10.8即为国际单位,此时以1GIU
表示。
②果糖(mg/h)——根据吸光度在标准曲线图上查得的果糖微克数×稀释倍数×1000。
2.3 生产能力
生产能力是指在适宜的工作条件下,酶活力降至原来活力的10%时,每公斤绝干固定
化酶能转化绝干葡萄糖为果葡糖的量,以t/kg表示。果葡糖中果糖含量为42%(W/W)。
∑S
P=━━━━………………………………………………(2)
W·1000
式中:P——生产能力,t/kg;
∑S——转化糖量的总和,kg;
W——转化时所用固定化酶的量,kg。
2.4 酶活力保存率
E
X2=━━━━×100% ………………………………………(3)
E0
式中:X2——酶活力保存率,%;
E——剩余活力;
E0——原酶活力。
2.5 强度
固定化酶用60℃蒸馏水浸没,然后缓慢搅动20h,再用两个手指用力压之,放开后不成浆(或
极少量成浆)仍硬,为合格。否则,为不合格。
2.6 重金属测定
2.6.1 试剂
2.6.1.1 硝酸:分析纯;
2.6.1.2 硫酸:分析纯;
2.6.1.3 盐酸:分析纯;
2.6.1.3.1 6N盐酸:量取500mL盐酸,用蒸馏水稀释至1000mL;
2.6.1.3.2 1N盐酸:量取83mL盐酸,用蒸馏水稀释至1000mL
2.6.1.4 氨水:分析纯;
2.6.1.4.1 5N氨水:量取333mL氨水,用蒸馏水稀释至1000mL;
2.6.1.4.2 1N氨水:量取66mL氨水,用蒸馏水稀释至1000mL;
2.6.1.5 pH3.5的乙酸盐缓冲液:称取25.0g乙酸铵溶于25mL蒸馏水中,加45mL 6N盐酸,用
稀盐酸或稀氨水调节pH至3.5,用蒸馏水稀释至100mL;
2.6.1.6 1%酚酞指示液:按GB 603配制。
2.6.1.7 饱和硫化氢水:按GB 603配制(此溶液于使用前制备)。
2.6.1.8 铅标准溶液(每毫升含0.01mg铅):按GB 602配制。临用前用蒸馏水准确稀释10倍
使成每毫升相当于0.01mg铅。
2.6.2 测定手续
2.6.2.1 样品处理
称取5.0g样品置于250mL凯氏烧瓶或三角烧瓶中,加10~15mL硝酸浸润样品放置片刻
(或过夜)后,缓缓加热,待作用缓和后稍冷,沿瓶壁加入5mL硫酸再缓缓加热,至瓶中溶液开
始变成棕色,不断滴加硝酸(如有必要可滴加些高氯酸)至有机质分解完全,继续加热,至生
成大量的二氧化硫白色烟雾,最后溶液应呈无色或微带黄色。冷却后将溶液移入50mL容量
瓶中,用水洗涤三角烧瓶,将洗液并入容量瓶中,加蒸馏水至刻度,混匀,每10mL该溶液相当
于1g样品。
取同样量的硝酸、硫酸按上述方法作试剂空白试验。
2.6.2.2 样品测定
2.6.2.2.1 溶液A:吸取含铅标准液1mL于50mL纳氏比色管中,加水至25mL混匀,加1滴1%
酚酞指示液,用稀盐酸或稀氨水调节pH至中性(酚酞红色褪去)。加入pH3.5的乙酸盐缓冲
液5mL,用蒸馏水稀释至40mL,混匀备用。
2.6.2.2.2 溶液B: 取一支与溶液A所配套的纳氏比色管,加入20mL样品液,加蒸馏水至
25mL混匀,加1滴1%酚酞指示液,用稀盐酸或稀氨水调节pH至中性(酚酞红色褪去),加入pH
3.5的乙酸盐缓冲液5mL,用蒸馏水稀释至40mL,混匀备用。
2.6.2.2.3 溶液C: 取一支与溶液A、B所配套的纳氏比色管,加入与溶液B相同量的相
同的样品液,再加入与溶液A相同量的铅标准液,加蒸馏水至25mL,混匀,加1滴1%酚酞指示
液,用稀盐酸或稀氨水调节pH至中性(酚酞红色刚褪去),加入pH3.5的乙酸盐缓冲液5mL,用
蒸馏水稀释至40mL,混匀备用。
2.6.2.2.4 向各管中加入10mL新鲜制备的硫化氢饱和液,混匀,放置10min后在白色背景
下观察,溶液B的色度不得深于溶液A的色度,溶液C的色度应与溶液A的色度相当或深于
溶液A的色度。
2.7 铅
按GB 5009.12《食品中铅的测定方法》中的双硫腙单色法执行。样品处理采用硝
酸-硫酸法。
2.8 砷
按GB 5009.11《食品中砷的测定方法》中的银盐法执行。样品处理采用硝酸-硫
酸法。
2.9 黄曲霉毒素B1
按GB 5009.22《食品中黄曲霉毒素B1的测定方法》执行。
2.10 大肠菌群
按GB4789.3《食品卫生微生物学检验 大肠菌群测定》执行。
2.11 沙门氏菌
按GB 4789.3《食品卫生微生物学检验 沙门氏菌检验》执行。

 
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